Johdanto kudoslohkojen tilavuuteen biologisessa mikroskoopissa
Biologinen mikroskooppi, jolla on valokeila, voi siirtää valokeilaa ylös ja alas kohtuullisen kirkkauden saavuttamiseksi, ja myös muuttuvan aukon aukko voidaan muuttaa kohtalaisen kirkkauden saavuttamiseksi. Jos valo on auringosta, valokeila voidaan nostaa asianmukaisesti ja muuttuvan valon aukko voidaan suurentaa asianmukaisesti. Jos valo on liian voimakas, valokeila voidaan laskea asianmukaisesti ja risteyksen aukko voidaan vähentää asianmukaisesti. Jos tunnet edelleen häikäisevän tässä tilanteessa, voit sijoittaa sopivan suodattimen kiinnikkeeseen valokeilaan. Tämä tammi voi saavuttaa kirkkauden, joka tyydyttää sinut. Tietysti valonheittimen ylä- ja ala -asentojen säätäminen voi muuttaa valonlukemisen aukon kokoa ja valita sopivat suodattimet, mikä vaatii tietyn harjoittelujakson ja kokemuksen.
Erittäin tärkeä kysymys biologisessa mikroskopiassa on näytteenotto- ja solujen eristäminen. Jäädytettyjen kuivumisen ja hartsin upotuksen jälkeen (FD) on käsiteltävä huolellisesti jäädytettyjä ultra-ohut leikkeitä sen varmistamiseksi, että kunkin osan 65 elementtipitoisuus ei ole vaurioitunut havainnon ja analyysin aikana. Röntgenmikroanalyysiin liittyvien lukuisten vaiheiden ja korkeiden kustannusten vuoksi on valitettavaa virheellisiä johtopäätöksiä, jos analysoidut solut ovat vaurioituneet tai kuolleet pitkittyneen ja monivaiheisen prosessoinnin jälkeen. Gelatinaasikäsittelyllä erotettujen sydänlihaksen soluilla on kaksi muotoa, yksi on pitkä sauvan muotoinen ja toinen pyöreä. Jälkimmäinen viittaa kuoleviin soluihin, jotka ovat vaurioituneet solujen erottamisprosessin aikana.
Elektrolyyttien pitoisuus ja jakauma näissä kahdessa solutyypissä ovat hyvin erilaisia biologisessa mikroskoopissa. Na on erittäin korkea ja k on erittäin pieni pyöreissä kardiomyosyytteissä, ja CA: n pitoisuus lineaarisissa dendriiteissä on erittäin korkea. Muiden analyyttisten menetelmien varmennuksen jälkeen on todistettu, että korkea NA ja matala K ympyränsoluissa ja korkea Ca mitokondrioissa ovat seurausta kalvovaurioista solujen erottamisen aikana. Solujen ja kudosten kylmä kiinnitysmenetelmä sisältää usein ensin sammuttamisen ja sen sitten nestemäisen typen varastoinnin. Sammutuskiinnitys on ratkaisevan tärkeää säilyttämisvaikutukselle. Elävät solut tai tuoreet kudokset ovat runsaasti vettä, ja sammutettuna solujen tai kudosten osat, jotka joutuvat suoraan kosketukseen kylmäaineen kanssa (varsinkin kun nestemäistä typpejä jäähdytykseen), jäädytetään ja kiinnitetään ensin ensin, muodostaen "kuoren", joka estää solujen keskiosaa murskaamisesta ja kiinnitetystä. Siksi röntgenmikroanalyysiä suoritettaessa usein havaitaan, että jääkiteet ovat suurempien solujen keskiosassa. Tämän tilanteen estämiseksi tapahtuu ainetta, jonka sulamispiste on korkeampi kuin nestemäinen typpi, mutta pienempi 806 ° C: lla käytetään kylmäaineena. Näitä aineita on monia, mutta niitä on helppo hankkia ja edullisin on keskittynyt propaania (kiehumispiste 42.120C, sulamispiste 187.10C, molekyylipaino 44,1), jolla on myös nopea jäähdytysnopeus. Mutta sen haitta on, että se on syttyvä.
