Biologinen mikroskooppi kudoslohkon tilavuudesta
Lauhduttimella varustettu biologinen mikroskooppi voi liikuttaa lauhdutinta ylös ja alas saadakseen sen kirkkauden kohtalaiseksi, ja se voi myös muuttaa säädettävän valon analysaattorin aukkoa saavuttaakseen kohtalaisen 9b kirkkauden. Jos valo on auringossa, kondensaattoria voidaan nostaa sopivasti ja muuttuvan optisen kohinan aukkoa voidaan suurentaa sopivasti. Jos valo on liian voimakasta, lauhdutin voidaan laskea sopivasti ja leikkauspisteen aukkoa voidaan pienentää sopivasti. Jos tunnet silti häikäisevän tässä tapauksessa, voit valita sopivan suodattimen ja asettaa sen lauhduttimen alla olevaan kannakkeeseen. Tämä tussah voi saada sinua tyydyttävän kirkkauden. Tietenkin on tarpeen hankkia kokemusta tietyn harjoittelun jälkeen lauhduttimen ylä- ja alaasennon säätämisestä optisen lukeman aukon koon muuttamiseksi ja sopivien suodattimien valitsemiseksi.
Biomikroskoopin erittäin tärkeä ongelma on, että 65 elementin pitoisuutta kussakin osassa kylmäkuivauksen ja hartsi upotuksen (FD) ja kylmäkuivauksen jälkeen on käsiteltävä huolellisesti, jotta tarkkailtavia ja analysoitavia soluja ei vahingoiteta. Koska röntgenmikroanalyysi ei sisällä vain monia vaiheita, vaan myös maksaa paljon, on erittäin valitettavaa tehdä väärä johtopäätös, jos analysoitavat solut ovat vahingoittuneita tai kuolleita soluja pitkäaikaisen ja monivaiheisen hoidon jälkeen. Esimerkiksi kollagenaasikäsittelyllä erotetuilla sydänsoluilla on kaksi muotoa, joista toinen on pitkä sauva ja toinen pyöreä. Jälkimmäinen on kuoleva solu, joka vaurioituu solujen erottelun aikana.
Elektrolyyttien sisältö ja jakautuminen näissä kahdessa solutyypissä ovat hyvin erilaisia biologisessa mikroskoopissa. Na on erittäin korkea ja K erittäin alhainen pyöreissä sydänlihassoluissa, ja ca-pitoisuus lineaarisissa dendriiteissä on erittäin korkea. Verrattuna muihin analyyttisiin menetelmiin on osoitettu, että pyöreäsolujen korkea Na ja matala K sekä mitokondrioiden korkea ca ovat seurausta solukalvovaurioista solujen erottumisen aikana. Solujen ja kudosten kylmäkiinnitysmenetelmä on usein kiinnittää ne ensin sammuttamalla ja sitten varastoida nestetyppeen. Sammutuskiinnitys on erittäin tärkeä säilöntävaikutuksen kannalta. Elävät solut tai tuoreet kudokset sisältävät runsaasti vettä. Sammutettaessa on usein niin, että solujen tai kudosten osat, jotka ovat suorassa kosketuksessa kryoprotektanttien kanssa (etenkin nestemäisellä typellä sammutettaessa), jäätyvät ja kiinnitetään ensin, jolloin muodostuu "kuori", joka estää keskuskalvon jäätymisen ja kiinnittymisen. osa soluista. Siksi röntgenmikroanalyysiä tehtäessä havaitaan usein, että suurempien solujen keskellä on jääkiteitä. Tämän estämiseksi jäähdytysaineena käytetään ainetta, jonka sulamispiste on korkeampi kuin nestemäisellä typellä, mutta kuivauslämpötila on alle 806c. Tällaisia aineita on monia, mutta helpoimmin saatavilla on tiivistetty propaani (kiehumispiste-42．120c, sulamispiste-187．10c, molekyylipaino-44.1), jolla on nopein jäähdytysnopeus. Mutta sen haittana on syttyvyys.
Biologinen mikroskooppi voi laittaa lihaskuidun erityiseen kehykseen, ja kun lihassyy supistuu tiettyyn vaiheeseen ja se on kiinnitettävä, suutin käynnistetään välittömästi, jolloin nestemäistä propaania suihkutetaan lihaskuidulle sammuttamaan ja kiinnittymään. se. Sitten lihaskuidut poistetaan yhdessä telineen kanssa ja laitetaan nestetyppeen. Jos verisoluja tai erotettuja soluja on kiinnitetty, sentrifugoi ensin alhaisella nopeudella solujen väkevöimiseksi, siirrä solut hopeiseen pieneen putkeen, jolla on hyvä lämmönjohtavuus, ja laita pieni putki nestemäiseen propaaniin jäädytystä ja kiinnitystä varten. Hallin laboratoriossa rotan haimaa kiinnitettäessä kaksi teräspalaa esijäähdytettiin nestemäisellä heliumilla (tai nestetypellä) ja kaksi kuparipalaa asetettiin pihdeillä haiman eteen ja taakse niin, että tätit sammutettiin ja kiinnitettiin. Kudoksia tai soluja voidaan säilyttää pitkään sen jälkeen, kun ne on sammutettu ja kiinnitetty ja siirretty nestetyppeen.
